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标题: 聚谷氨酸分子量大小测定 [打印本页]

作者: hu123    时间: 2014-8-27 15:33
标题: 聚谷氨酸分子量大小测定
一、实验目的
采用SDS-PAGE进行聚谷氨酸分子量大小的测定
二、实验材料
2.1 实验试剂
2.1.1   5×样品缓冲液:Tris-HCl 60 mmol/LSDS 20 g/L,甘油  250 mL/L,巯基乙醇  14.4
  mmol/L,溴酚兰1 g/LpH 6.8
考马斯亮蓝染液:将1.25 g考马斯亮蓝  R250溶在230 mL甲醇与230 mL蒸馏水中,
搅拌1小时后加40 mL冰醋酸,过滤。
考马斯亮蓝脱色液:甲醇  300 mL,冰醋酸  100 mL,蒸馏水  600 mL
2.2.2  电泳过程中所使用的溶液[47]
A液:丙烯酰胺溶液30%(W/V),即丙烯酰胺29.2 g,甲叉双丙烯酰胺0.8 g,混合后,用蒸馏水溶解并定容至100 mL
B液:4×分离胶缓冲液,即Tris-HCl 1.5 mol/LSDS 4 g/LpH 8.8
C液:4×浓缩胶缓冲液,即Tris-HCl 0.5 mol/LSDS 4 g/LpH 6.8
10%过硫酸氨:现用现配,取10 g过硫酸氨,用蒸馏水溶解并定容到100 mL
电泳缓冲液:Tris  25 mmol/L,甘氨酸  192 mmol/LSDS 1 g/LpH 8.3
2.2实验器材
   电泳仪,电流槽
三、实验方法
  3.1 将降解后的小分子聚谷氨酸配制成浓度为20  mg/mL的溶液2  mL,之后用SDS
PAGE测定分子量。所用的标准蛋白分子量依次为14.4 KDa20.2 KDa26.0 KDa35.0
KDa45.0 KDa66.2 KDa94.0 KDa。电泳液的配制见试剂的配制一栏,凝胶的配制
见表2。按常规方法制备。
2  电泳凝胶的配制
Tab.2 Preparation of gel electrophoresis
组分        分离胶(12%)        浓缩胶(5%)
A           4.0 mL          0.67 mL
B           2.5 mL           
C                          mL
过硫酸氨        μ             μL
  蒸馏水     3.5 mL            2.3 mL
TEMED        5 μL           10 μL
3.2 具体操作如下:               
1  灌制分离胶
组装凝模具可按照使用说明书,装配好灌胶用的模具;
A液、B液用蒸馏水在一个小烧瓶或试管中混合,丙烯酰胺(A液中)是神经毒素,
操作时必须使用手套;
加入过硫酸铵和TEMED后,轻轻搅拌使其混匀(过量气泡的产生会干扰聚合)。
凝胶很快会聚合,操作要迅速;
小心将凝胶溶液用吸管沿隔片缓慢加入模具内,这样可以避免在凝胶内产生气泡;
当加入适量的分离胶溶液时,轻轻在分离胶溶液上覆盖一层15 mm的水层,这使
凝胶表面变得平整;                  
等待3060 min,使凝胶聚合。当凝胶聚合后,在分离胶和水层之间将会出现一个
清晰的界面,可以微微倾斜模具,检测凝胶是否聚合。另外的办法是将灌完分离胶后的
剩余的凝胶溶液置于一个小容器内,作为检测凝胶聚合的标志。如果凝胶渗漏,但还没
有覆盖水层,可以回收分离胶溶液,重新装配玻璃板和隔片,在凝胶聚合之前重新灌胶,
胶聚合后将水层吸出。
2  灌制浓缩胶
吸尽覆盖在分离胶上的水;
A液、C液和蒸馏水在三角瓶中或小试管中混合;
加入过硫酸胺和TEMED,并轻轻搅拌使其混匀;
将浓缩胶溶液用吸管加至分离胶的上面,直到凝胶溶液到达前玻璃板的顶端;
15孔的梳子插入凝胶内,直到梳子齿的底部与前玻璃板的顶端平齐。必须确保梳
子齿的末端没有气泡。
待胶聚合后(约30 min),小心拔出梳子,不要将加样孔撕裂;
将凝胶放入电泳槽内,将电泳缓冲液加入内外电泳槽中,使凝胶的上下端均能浸泡
在缓冲液中。
3  制备样品和上样
   样品的处理:γ-PGA样品(浓度约为20 mg/mL)与样品缓冲液按1:1的比例混合,
100  ℃水浴处理2~5 minMarker的处理方法相同。用微量注射器将样品加入样品孔中,
上样量为15  μL。将蛋白质样品加至样品孔的底部,并随着染料水平的升高而升高注射
器针头。避免带入气泡,气泡易使样品混入到相邻的加样孔中。
   电泳条件:浓缩胶电压为120 V,进入分离胶后电压为140 V2 h左右溴酚兰接近
胶边缘,结束电泳。
4  储存液[49
   标准蛋白染色:用考马斯亮蓝染色液(考马斯亮蓝R250 2.5 g/L,用甲醇::冰乙
=4.5:4.5:1配制,V/V)染色过夜。
第一次脱色:凝胶从染色液中取出,用去离子水洗两次,再用脱色液(甲醇300 mL/L
乙酸100 mL/L)在脱色摇床上脱色过夜。
复染:凝胶从前脱色液中取出,使标准蛋白着色后,水洗两次,再用阿利新兰8GX
对凝胶复染(0.5%的阿利新兰8GX,用0.3%的冰乙酸配制),染色20 min
固定:凝胶从染色液中取出,置于60%乙醇溶液(V/V)中在脱色摇床中摇动40 min
第二次脱色:凝胶从染色液中取出,用去离子水洗两次,最后用去离子水置于脱色
摇床上脱色过夜,期间更换脱色液34次。
   





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